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Industry News
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公司建设有SPF级实验动物繁育设施5000余平方米,繁育实验动物品种(品系)十余种,业内资深大咖主持质控团队把控动物质量,年产100余万只SPF高品质啮齿类实验动物,持续对外提供高品质的实验动物。
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- 2024-12-16
- 2024-12-16
- 2024-12-16
- 2024-07-02
- 2019-10-25
- 2019-09-06
- 2019-08-27
- 2019-08-27
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白细胞减少症防治药
试验升高白细胞药时,必须选用小鼠和犬白细胞减少模型各一项。但若小鼠选用化疗药所致白细胞减少模型时,则大动物应选择辐射所致白细胞减少模型,反之亦然。大动物试验中,若有条件,可在活杀动物时涂骨髓片做骨髓分类计数。实验条件必须严格控制。所述的实验模型,血小板变化过程与白细胞基本一致,故这些模型亦可适用于升高血小板的药物。试验升血小板药时应增加CFU-Meg (巨核系细胞生成单位)等指标。实验宜选用小鼠LACA、C57(80天左右,体重18-22克,雌雄均可),其它品系动物亦可。犬可用家犬(年龄2-4岁,同一批试验动物体重相差不得超过4公斤),有条件时可用Beagle狗(年龄1岁左右,雌难均可)。
一、环磷酰胺(Cy)或阿糖胞苷(Ara-C)所致小鼠白细胞减少症的实验方法
小鼠腹腔注射Cy 100mg/kg,每日一次,连续3天,或小鼠 腹腔注射Ara-C 250mg/kg,每日一次,连续3天,停药后3天左右白细胞下降至药前值得20-30%。实验动物分成5组:A, B,C,D,E,每组5只动物。
A组———受试药物低剂量组。给受试药5天(每日给药次数,视受试药的性质而定,一般为1—2次),第3天给受试药的同时腹腔注射Cy或Ara—C,每日一次,连续3天。
B组———受试药中剂量组。用药方式同A组。
C组———受试药高剂量组。用药方式同A组。
D组———阳性药对照组。实验动物给予阳性药。Cy或Ara—C用法同A组。
E组———模型对照组。在相应的时间内给子药物溶剂。Cy或Ara-C用法同A组。
各组动物于末次给Cy或Ara-C后3天,各取3只动物测定CFU-S (脾结节生成单位)和CFU-GM (粒系和单核一巨噬细胞团生成单位)。测定方法参照《药理实验方法学》第42章或其它有关书刊,此实验应重复1-2次。
二、辐射所致白细胞减少症的实验方法
小鼠经7.50 Gy(剂量率为450伦/分左右时)照射后3-5天,骨髓DNA(或有核细胞总数)下降至最低水平,照射后7-9天白细胞下降至最低值。此模型可测算脾脏系数 (脾重/体重),直接计脾表面CFU-S数和测定骨髓DNA含量或骨髓有核细胞总数等指标。
实验时动物同分为5组,每组至少10只动物。
A组———受试药低剂量组。预防性(照射前)或治疗性(照射后)给予受试药均可。
B组———受试药中剂量组。给药方式同A组。
C组———受试药高剂量组。给药方式同A组。
D组———阳性药对照组。实验动物给予阳性药。
E组———对照组。在相应时间内给子药物溶剂。
各组动物于照射后7天称体重脱日处死,取脾脏称重,后固定于Bouin氏液, 6小时后取出计脾表面遣血灶(CFU-S)数。取一侧完整股骨测定骨髓DNA或计骨髓有核细胞总数。
三、Cy所致犬白细胞减少症的实验方法
犬口服Cy 5-7mg/kg,每日一次连服5天,药后(系指第一次口服Cy后)7-11天白细胞下降至最低值水平,约为药前值得30%左右。实验可选用犬随机分成受试药高、中、低剂量组,阳性药对照组和模型对照组,4-6只/组。实验动物观测 21天,观测指标及观察时间如下:
临床表现:活动、食欲、呕吐、二便、体温、感染、出血等每日记录一次,体重每周一次。
血细胞计数:白细胞及分类、血小板、血红蛋白(或红细胞)、网织红细胞,药后第一天开始隔日一次。
骨髓细胞:有核细胞总数,有条件时可做骨髓涂片分类或CFU—GM等,药后21天活杀动物前进行。
病理组织学检查,于药后21天活杀动物后进行,其重点为造血组织和有变化的组织。
四、60CO—γ射线对屏蔽骨盆的犬照射6.5Gy (剂量率为100伦/分左右时)所致白细胞减少症的实验方法
实验犬于照射前用长20cm,宽10cm,高5cm的铅砖7块,平放于骨盆前2cm处,60CO-γ射线双侧照射。动物无屏蔽处组织吸收剂量为6. 50Gy,屏蔽处组织吸收剂量为0.40-0.60 Gy。实验动物照射后7-9天白细胞下降至最低水平,均为药前值的20%左右。实验动物观察30天。观测指标及观测时间参照实验(三)。骨髓有核细胞总数、CFU-GM等,于药后31天活杀动物前进行。病理组织学检查于药后31天活杀动物后进行。