行业新闻
Industry News
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公司建设有SPF级实验动物繁育设施5000余平方米,繁育实验动物品种(品系)十余种,业内资深大咖主持质控团队把控动物质量,年产100余万只SPF高品质啮齿类实验动物,持续对外提供高品质的实验动物。
免疫缺陷品系
近交系
封闭群
基因工程小鼠
实验室动物饲料
实验室动物垫料
实验室动物笼具
实验室动物水瓶
其他配套产品
实验动物第三方机构检测报告
实验动物百试通自检报告
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- 2024-07-02
- 2024-06-07
- 2024-06-07
- 2024-04-16
- 2019-10-25
- 2019-09-06
- 2019-08-27
- 2019-08-27
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防治脑血管病和脑缺血药
引起脑缺血的病很多,评价药物的难度较大,应根据所试药物的适应症,选用相应的方法来评定药物作用。
1. 用于治疗脑栓塞的药物需进行:(1)离体实验;(2)大脑中动脉阻断实验;(3)SHRSP脑卒中的预防或治疗;(4)全脑缺血及缺氧实验中选1-2个。
2. 蛛网腔下出血:(1)离体实验;(2)脑血管解痉实验
3. 高空脑缺氧或心脏骤停引起的脑缺氧:(1)耐缺氧实验2种方法;(2)全脑缺血1-2种方法。
治疗脑卒中和脑缺氧急性期的药物需静注或静滴,可预防给药或脑卒中后一定时间给药。脑卒中后遗症药物需长期治疗,给药途径以口服为宜。实验过程中,很多麻醉剂对脑有保护作用,因此应严格选择麻醉剂,麻醉时要检测血气;要严格控制温度,室温相差不要超过±1℃,体温保持37-38℃,头部温度的恒定特别重要。
脑流血的测定方法很多,注意方法的可靠性。脑组织学检查除梗塞面积(TTC染色)、神经细胞病变外,还包括脑水肿,不能单独测脑水肿。观察行为和脑功能要客观细致。生化指标包括能量代谢和毒性产物,如乳酸、ATP、磷酸肌酸、氧及葡萄糖摄取率,自由脂肪酸,脂质过氧化产物,兴奋性氨基酸等。由于有些方法难度大,在没有条件时,可先测能量代谢和脑组织的氧分压和PH值。
一、离体实验
用高钾及其他激动剂(去甲肾上腺素或5-羟色胺)引起家兔基底动脉及其他血管收缩,求出所试药物抑制血管收缩的IC50,以了解药物作用的组织选择性。
二、在体实验
1.耐缺氧实验
(1)小 鼠低压缺氧实验:取体重约为20g的小鼠,雌雄各半,放置在低压的密闭瓶内,观察动物存活时间及在一定时间内动物死亡数,求出ED50。
(2)大鼠缺氧性缺氧实验:将150-180g放置在充氮的瓶内,1min后立即取出,观察1h大鼠死亡数,对照组全部死亡,求出给药组和阳性药对照组ED50。
(3)组织中毒性缺氧:先用大鼠或小鼠,快速静注5mg/kg氰化钾,对照组死亡率90%,求出给药组和对照组ED50。
(4)高碳酸性缺氧:麻醉大鼠人工呼吸,注射肌肉松弛剂。记录大脑感觉运动区的脑电图(EEG),当EEG平稳后,去掉人工呼吸2min,记录从停止人工呼吸到EEG消失的时间。10min后再次停止人工呼吸3min,观察EEG恢复到正常的时间。
2.全脑缺血实验
(1)大鼠四脑动脉阻塞模型:即双侧椎动脉和双侧颈动脉阻断。
(2)大鼠三脑动脉阻断模型:即阻断大鼠的基底动脉和双侧颈动脉。
(3)阻断大鼠双侧颈总动脉加上放血或滴注易控性降压药。
(4)小鼠断头缺血法:即小鼠断头后不同时间内迅速取脑,测定脑组织的乳酸,ATP和磷酸肌酸等。
3.局灶性脑缺血模型
(1)大脑中动脉阻断法:将大鼠大脑中动脉分离出来结扎,也可以用电凝或热凝的方法阻断,造成局灶性脑缺血性损伤,形成脑梗塞灶。观察指标:梗塞面积;梗塞边缘区的组织学或血流量。
(2)脑多发性梗塞:从大鼠的颈内动脉注入一定大小塑料微球或致凝物质,可形成多发性脑梗塞。
(3)电刺激家兔或大鼠的颈动脉,或局部注射Fecl2可引起局部损伤性血栓形成。
观察指标:脑组织损伤情况;一段时间后的条件反射或行为。
4.脑卒中模型:
选用6-7周龄脑卒中自发性高血压大鼠,每天饮用一定量的1%盐水,以促进脑卒中发生。比较空白对照组。阳性药对照组和所试药组的预防和治疗作用。
观察指标:血压和心率;体重;脑卒中行为评分(如下图);组织学检查;存活时间及死亡率。
脑卒中评分
评分 |
症状 |
0 |
正常 |
1 |
运动轻度减少或轻度兴奋 |
2 |
运动明显减少或激惹性亢进 |
3 |
不能步行、忧郁性症状 |
4 |
不能站立、后肢麻痹、偏瘫、尿失禁等 |